lunes, 8 de enero de 2024

Práctica laboratorio 4 (reconocimiento de las características estructurales y moleculares del ADN en células eucariotas)

 CUARTA PRÁCTICA:  EXTRACIÓN DE ADN DE ARÁNDANOS, PLÁTANO y DE LAS CÉLULAS DEL EPITELIO BUCAL


OBJETIVO DE LA PRÁCTICA

- Reconocer las características estructurales y moleculares del ADN de las células eucariotas.

- Saber diferenciar el ADN del núcleo celular.

- Estudiar la forma de la molécula de ADN, de las células eucariotas y procariotas.


MATERIALES

  • Tubos de ensayo, 
  • Agua mineral o destilada
  • Sal común para crear una capa iónica en el ADN, que permita separarlo de otras proteínas (como las histonas)
  • Jabón líquido para lisar las células
  • Varilla de vidrio para remover
  • Alcohol de 96 grados (preferiblemente frío) o isopropanol, que permitirá precipitar el ADN.



PROCESO

Primeramente, cogemos un tubo de ensayo, donde se verterá unos 10 ml de agua, una pizca de sal común diluida y una gota de jabón líquido. Removemos suavemente con una varilla para evitar la formación de espuma.

Luego, vertemos dentro del mismo tubo de ensayo una gran cantidad de saliva, que llevará las células del epitelio bucal. NOTA: para tener una mayor cantidad de células, se recomienda raspar el epitelio bucal con los dientes antes de verter la saliva en el tubo. En el caso de las frutas, se verte en los tubos la pulpa de cada una de ellas que se obtiene machacándolas en el mortero.

Después, removemos suavemente evitando la formación de espuma. Por último, vertemos unos 10 ml de alcohol de 96 grados a través de las paredes del tubo de ensayo.




RESULTADO PRÁCTICA

Como resultado se verán filamentos blanquecinos en la fase apolar (zona en la que se encuentra el alcohol). Esto es… ¡El ADN precipitado!





sábado, 6 de enero de 2024

Práctica laboratorio 1 (medio isotónico e hipotónico)

PRIMERA PRÁCTICA:

 EXPERIMENTO OSITOS

 

OBJETIVO DE LA PRÁCTICA

Queremos realizar esta práctica, para estudiar los medios isotónicos e hipotónicos y su impacto en las células que serían los ositos.

MATERIALES

  •  3 Ositos haribo
  •  3 Matraz 
  • Azúcar 
  • Agua 
  • 1 rotulador

PROCEDIMIENTO

En primer lugar, ponemos la misma cantidad de agua en los tres matraces.

Luego en cada matraz echamos una cantidad de azúcar diferente.

MATRAZ 1: No añadimos azúcar solo agua.

MATRAZ 2: Añadimos poca cantidad de azúcar 

MATRAZ 3: Añadimos mucha cantidad de azúcar

Después, removemos con una varilla hasta que el azúcar esté disuelta y añadimos los ositos en cada uno de los matraces, y lo dejamos reposar 1 día. Por último, observamos que forma han adquirido los ositos.

RESULTADO PRÁCTICA

MATRAZ 1: osito rosa, medio isotónico . 

MATRAZ 2: osito amarillo, medio hipotónico .

MATRAZ 3: osito verde , medio hipertónico .


Matraz 1: Este matraz contiene un poco de azúcar. El osito al encontrarse en un medio isotónico se debería de haber quedado igual, pero al no saber la cantidad específica que contiene un osito hemos añadido menos. Por ello el osito se ha hinchado un poco produciéndose turgencia.

Matraz 2: Este matraz solo contiene agua . Al encontrarnos en un medio hipotónico el agua va hacia el medio hipertónico , que en este caso es el osito. Produciendo una turgencia ( el osito se hincha hasta casi deshacerse)

Matraz 3: Este matraz contiene mucha azúcar . Al encontrarnos en un medio hipertónico , el osito es el medio hipotónico y como consecuencia se produce plasmólisis ( el osito se arruga perdiendo tamaño). 






lunes, 18 de diciembre de 2023

Práctica laboratorio 3 (saponificación)

TERCERA PRÁCTICA:

EXPERIMENTO JABÓN


OBJETIVO DE LA PRÁCTICA

Con esta práctica, queremos estudiar el proceso de la saponificación.


MATERIALES

  • 3 litros de aceite usado y filtrado en 3 matraces.
  • 3 litros de infusión de caléndula en agua (100 gramos de caléndula y lo demás agua).
  • Pétalos de caléndula (Para decorar).
  • 500 gramos de sosa cáustica (NaOH).
  • 1 Olla.
  • 1 Hornillo.
  • 1 Espuerta.
  • 1 Cuchara grande.
  • 3 Bandejas de plástico (moldes).


PROCEDIMIENTO

En primer lugar mezclamos los 100 gramos de la caléndula con agua para hacer la infusión y la colocamos en la olla, y utilizando el hornillo lo vamos calentando de 5 a 10 minutos sin parar de remover con la cuchara.

En segundo lugar, con un filtro colamos la infusión y la dejamos enfriar un día para así poder echar la sosa cáustica.

En tercer lugar, se le añade a esta mezcla los 500 gramos de sosa cáustica y se deja enfriar otra vez.

En cuarto lugar, una vez esta sosa cáustica está enfriada, la pasamos de la olla a la espuerta para así poder añadirle los 3 litros de aceite usado y previamente filtrado mientras removemos en una única dirección para que no se interrumpa ni paralice este proceso de saponificación. Después, lo volvemos a dejar enfriar.


En quinto lugar, le echamos la caléndula para decorar y colocamos la mezcla en unos moldes (en este caso, bandejas de plástico). Luego, volvemos a dejar enfriar.

Por último, una vez esté completamente frío lo cortamos en las porciones de jabón correspondientes según el tamaño que queramos y lo desmoldamos.

NOTA: Para que el jabón este listo para usar, habrá que esperar un mes para que la sosa haya adquirido las propiedades.


RESULTADO PRÁCTICA

Como resultado obtendremos un jabón ecológico, ya que reutilizamos ese aceite que hemos usado para cocinar. Podremos observar como se va realizando el proceso de saponificación, partiendo de una mezcla de líquidos hasta un sólido.

miércoles, 11 de octubre de 2023

Práctica laboratorio 2 (identificación de glúcidos)

            SEGUNDA PRÁCTICA: 

           IDENTIFICACIÓN DE GLÚCIDOS

Los monosacáridos y la mayoría de los disacáridos poseen poder reductor, debido al grupo carbonilo que tienen. Este carácter reductor puede estudiarse en una reacción redox con el líquido de Fehling. Se utiliza una mezcla de dos reactivos: el Fehling A (sulfato cúprico) de color azul, y el Fehling B (tartrato sódico-potásico) que es incoloro. La reacción con el glúcido reductor (en caliente) da lugar a óxido de cobre (I) que forma un precipitado de color rojo. De este modo, el viraje de color indica que se ha producido la citada reacción y que, por lo tanto, el glúcido presente es reductor.

OBJETIVO DE LA PRÁCTICA

El objetivo de la práctica es reconocer si hay glúcidos reductores en cada disolución.


MATERIALES
  • Gradilla con tubos de ensayo.
  • Vasos de precipitados
  • Pipetas
  • Líquido de Fehling A y B.
  • Muestras de glúcidos: A, B, C Y D
NOTA: ES IMPORTANTE UTILIZAR DOS PIPETAS DIFERENTES PARA CADA LÍQUIDO DE FEHLING.



PROCEDIMIENTO

Usando dos pipetas diferentes, se añade 2 ml de Fehling A + 2ml de Fehling B en un vaso de precipitado y se agita. 
Luego apuntar el color que adquiere la mezcla, apuntar en los 5 tubos de ensayo las letras A, B, C, Y D, y repartir en 5 tubos de ensayo.
A continuación, añadir 1 cucharada de las muestras de glúcidos monosacáridos, a cada uno de los tubos de ensayo, observar cambios y apuntar el color que adquieren.
Por último, calentar los tubos al baño maría, preparado anteriormente en la placa calefactora.








RESULTADO PRÁCTICA



TUBO A                                                                      TUBO B
Color: Rojo                                                                  Color: Rojo
Poder reductor: Si                                                        Poder reductor: Si
Característica: Soluble                                                Característica: Soluble
Tipo de Glúcido: Glucosa                                           Tipo de Glúcido: Lactosa 

TUBO C                                                                     TUBO D
Color: Azul                                                                 Color: Azul
Poder reductor: No                                                     Poder reductor: No
Característica: Soluble                                               Característica: No soluble
Tipo de Glúcido: Sacarosa                                         Tipo de Glúcido: Almidón                                   



Práctica laboratorio 4 (reconocimiento de las características estructurales y moleculares del ADN en células eucariotas)

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